Differenciál diagnózis (szín) táptalaj
Szerda Endo. Ahhoz, hogy 100 ml egy semleges-TION olvasztott 3% sima agart adunk 1 ml 10% -os vizes kristályos karbonát-nátrium, tartják a gép azon tekucheparovom-chenie 10 percen át 100 ° C, lehűtjük 60 ° és a steril hozzáadunk 1 g kémiailag tiszta laktózt, feloldunk 5 ml steril vizet, és a keveréket a bíbor vízmentes nátrium-szulfit. A keveréket a következőképpen állítjuk elő-vezetőképes módon. 0,5 g nátrium-szulfit 5 ml steril vízben, és hozzáadjuk 1 ml telített oldatához spiro tovogo bázikus fukszin kristályos mindaddig, amíg a folyadék színtelen vagy enyhén rózsaszínes. A fehérített szulfit keverék bíbor hozzáadjuk a megolvadt agar, és az utolsó fogadott maet-rózsaszínes. Alapos keverés után (figyeli úgy, hogy a habot nem alakul ki), a táptalajt szétosztjuk csészéket. Amikor a hűtőközeg teszi a szín vastag rétegben van egy rózsaszínes árnyalat. Ebben a környezetben, akkor könnyen megkülönböztetni az E. coli, paratífuszt baktériumok.
Készítsünk egy közepes előtt vetés. Annak érdekében, hogy a bőrpír fényvédelem. Elérhető, mint a száraz por. Elkészítés A címkén jelzett.
Szerda Hiss. Gyártógépek indikatoraAndrede figyelembe 100 ml desztillált vizet, 0,5 g savas fukszinnal, és 16 ml 4% -os vizes nátrium-hidroxid oldatot. Inkubáljuk vayut-víz fürdőben 10 percig. Tároljuk egy sötét helyen.
A táptalajt úgy állítjuk az indikátorral Andrede nyomon vezetőképes módon. Készítsünk peptonvíz. Ehhez, hogy 1% peptont és 0,5% nátrium-klorid, amely egy meghatározott térfogatú desztillált vízzel. Pepton főtt oldódásig, szűrjük redős papírszűrőn szűrjük, pH-ját 7,0-7,2. Meglúgosítás után 10% -os NaOH-oldattal ismét visszafolyató hűtő alatt forraljuk 10 percig, szűrjük, és kész a 1% pepton-víz (pH = 7,0-7,2) adunk hozzá 1% Andrede indikátor. Ahhoz, hogy a tápközeget adtunk az indikátor kívánt szénhidrát vagy többértékű alkoholok mennyisége a 0,5% - 1% (lakk-tozu, glükóz, szacharóz, mannit, dulcit, és mások.). A közeget kémcsövekben osztjuk szét, felszerelve, hogy igazodjon a Obra-mations gáz fermentációs csövek. Ahelyett, hogy cső-ellenőrző bitek néha elhelyezett gyapjú - 0,02 g mocsári-ku. Tört sterilizáció végrehajtása hőmérsékleten 100 ° C-on 20 percig három egymást követő napon.
Megfelelően főtt közepes szalmasárga színű.
Szerda Kessler. Az 1 liter csapvizet bevezetett 50 ml friss szarvasmarha epe és 10 g peptont. Főtt vízfürdőben 15 percig, folyamatosan rázzuk. A teljes oldódás után tápközeget átszűrjük gyapot és 10 g laktózt. Állítsuk be a pH 7,7. 1 liter táptalajt adtunk 4 ml 1% -os vizes genciániboíyával öntjük kémcsöveket a úszók. Form-autoklávban egy 0,1 MPa nyomáson 15 percig.
PH-értékének meghatározása a tápközegek
Termesztésére mikrobák mesterséges média különösen fontos hidrogénion-koncentráció, mivel minden egyes típusú mikroba nőhet csak egy bizonyos savasságát vagy lúgosságát. A legtöbb baktérium igazított növekedés és a szaporodás semleges vagy enyhén lúgos közegben (pH = 7,0-7,6).
Két módszer használható, hogy meghatározzuk a tápközegben reakciók: elektrométer (pH-mérővel), és a kolorimetriás. A laboratóriumban Prac-tic a leggyakrabban használt a legtöbb egyszerű kolorimetriás eljárás Michaelis, változása alapján a az indikátor színe miatt a disszociációs belőle függően hidrogénionok koncentrációját a tápközegben. Annak megállapítására, a pH-Michaelis nitrofenolovogo szám használt mutatók. Tekintettel arra, hogy a növekvő mikroorganizmus előállítására gyengén lúgos reakcióközegben, a meghatározó közeg pH-ja használunk indikátorként metannitrofenol, amely lehetővé teszi, hogy meghatározzuk a pH-tartomány 6,8-8,4. indikátor oldatok készítünk desztillált vízben, és tároljuk sötét üvegben csiszolatos dugóval.
Összetétele táptalaj.
Hogyan ápolják a laboratóriumban mikrobák?
Melyek a táplálkozási környezet következetesség?
Hogyan lehet megkülönböztetni a táplálkozási környezetének eredete?